Tiêu chuẩn quốc gia TCVN 12600:2018 (EN 16006:2011) về Thức ăn chăn nuôi - Xác định tổng fumonisin B1 và B2 trong thức ăn hỗn hợp bằng phương pháp làm sạch ái lực miễn dịch và HPLC pha đảo với detector huỳnh quang có tạo dẫn xuất trước cột hoặc sau cột

Tải văn bản

Thuộc tính
Nội dung
Tiếng anh
Lược đồ

Chất hiệu chuẩn	Dung dịch chuẩn trung gian (4.21)	Bình định mức (5.13) (ml)	Dung dịch chuẩn gốc (4.20)	Nồng độ FB₁ và FB₂ (ng/ml)
1	50	20,0	5 000	10
2	125	10,0	1 000	50
3	125	5,0	500	100
4	500	2,0	50	1 000
5	1 000	2,0	25	2 000

Các mức hiệu chuẩn này là các khuyến nghị và có thể được điều chỉnh theo nhu cầu cụ thể. Nồng độ chính xác của các mức hiệu chuẩn phải được tính dựa trên độ pha loãng cuối cùng và nồng độ chính xác của dung dịch gốc (4.20).

CHÚ THÍCH: Các dung dịch trên có thể được bảo quản trong 5 ngày ở 6 °C ± 2 °C ở nơi tối.

4.23 Cột ái lực miễn dịch (IAC)

Các cột ái lực miễn dịch phải có một pha tĩnh với các kháng thể đơn dòng cố định đặc hiệu với ít nhất là fumonisin B₁ và B₂. Để phù hợp cho phương pháp này chúng phải đáp ứng các yêu cầu dưới đây:

Phần dịch chiết lớn hơn 5 ml từ nguồn nguyên liệu thức ăn hỗn hợp đại diện không chứa fumonisin được trộn với FB₁ và FB₂ theo tỷ lệ các phần bằng nhau ở nồng độ 920 ng/ml (cao) hoặc 110 ng/ml (thấp) cho tổng của cả hai FB₁ và FB₂. Sau đó pha loãng 5,0 ml dịch chiết thêm chuẩn này đến tổng thể tích 50,0 ml (xem 6.2).

Sau các bước được mô tả trong 6.3 và 6.4, sẽ thu được nồng độ dự kiến trong các dung dịch để bơm hoặc là 460 ng/ml hoặc là 55 ng/ml cho tổng của cả hai FB₁ và FB₂.

Sau khi đo (Điều 7) các dung dịch này, nồng độ FB₁ và FB₂ thu được có thể được tính theo Công thức (1) và Công thức (2) trong Điều 8. Chia tổng nồng độ quan sát được của FB₁ và FB₂ cho nồng độ dự kiến thu được hiệu suất của cột ái lực miễn nhiễm.

Hiệu suất này phải là 99 % ± 18 % (U, k = 2) ở mức cao và 118 % ± 18 % (U, k = 2) ở mức thấp.

Việc kiểm tra cột như trên cần được thực hiện cho mỗi mức (nồng độ) trên ít nhất ba cột được chọn ngẫu nhiên của mỗi lô cột ái lực miễn dịch mới sử dụng. Nếu sau khi thử, lô cột không đáp ứng được các yêu cầu nêu trên, thì sử dụng lô cột khác hoặc phải điều chỉnh các điều kiện trong 6.3 để thỏa mãn các yêu cầu.

...

Bạn phải đăng nhập hoặc đăng ký Thành Viên TVPL Pro để sử dụng được đầy đủ các tiện ích gia tăng liên quan đến nội dung TCVN.

Mọi chi tiết xin liên hệ: ĐT: (028) 3930 3279 DĐ: 0906 22 99 66

5 Thiết bị, dụng cụ

Sử dụng các thiết bị, dụng cụ thí nghiệm thông thường và các thiết bị sau:

5.1 Máy nghiền

5.2 Máy trộn

Khi trộn tạo ra một chuyển động tạo nếp gấp của vật liệu đi qua, ví dụ, máy có một trống quay với các cánh vây cá và thanh gạt bên trong hoặc di chuyển lộn lên xuống trong một cái hộp kín.

5.3 Máy trộn vortex

5.4 Máy lắc phòng thí nghiệm.

5.5 Bình 250 ml có nắp vặn.

5.6 Ống đong có chia vạch, dung tích 5 ml, 50 ml, 1000 ml và 2 000 ml.

...

5.8 Cân phân tích (d = 0,01 g).

5.9 Bộ lọc vi sợi thủy tinh, không có chất kết dính với kích thước lỗ khoảng 2 µm.

5.10 Phễu lọc, có kích thước thích hợp.

5.11 Lọ cấp mẫu tự động, kích thước thích hợp có nắp đậy.

5.12 Bình chứa dùng cho cột IAC

Có kích thước thích phù hợp với bộ chuyển đổi để đấu nối với đầu của IAC.

5.13 Bình định mức [loại A, trong TCVN 7153 (ISO 1042)], dung tích 2 ml, 5 ml, 10 ml và 20 ml.

5.14 Xyranh thủy tinh kín khí và/hoặc bộ pipet tự động chuyển trực tiếp

Có khả năng phân phối chính xác các thể tích sau: 5 µl, 50 µl, 125 µl, 160 µl, 500 µl và 1 000 µl.

...

5.16 Hệ máy HPLC, bao gồm:

5.16.1 Hệ thống phân phối dung môi

Có khả năng tạo ra gradient hai kênh với độ chính xác đầy đủ ở áp suất yêu cầu.

5.16.2 Bơm mẫu tự động

Có thể bơm đủ thể tích dung dịch với độ lặp lại đủ và đối với việc tạo dẫn xuất trước cột, có khả năng trộn thuốc thử và dung dịch mẫu trước khi bơm.

5.16.3 Cột sắc ký

Bất kỳ cột nào bảo đảm pic đối xứng (hệ số bất đối xứng của pic 0,9 < As < 1,4 ở 10 % toàn bộ chiều cao), đủ thời gian lưu (k > 2) và độ phân giải (Rs > 1) đối với FB₁ và FB₂.

5.16.4 Detector huỳnh quang

Có thể đo ở bước sóng kích thích và phát xạ cần thiết và được trang bị cuvet dòng chảy có kích thước phù hợp.

...

Có thể dùng hệ tạo dẫn xuất sau cột bán sẵn hoặc hệ thống tự lắp. Nếu dùng hệ thống tự lắp cần có:

- Máy bơm thuốc thử: có khả năng tạo ra áp suất để cấp dòng chảy thuốc thử vào buồng tạo dẫn xuất ổn định không có xung.

- Ống Polyetheretherketone (PEEK): đường kính ngoài theo yêu cầu của hệ HPLC sử dụng và đường kính bên trong khác nhau, ví dụ: đường kính ngoài 1/16" và đường kính trong: 0,04", 0,02", 0,01" và/hoặc 0,005".

- Bộ trộn chữ T: bằng Polyetheretherketone (PEEK) có thể tích bên trong nhỏ.

5.17 Bộ lọc Nylon cỡ lỗ 0,45 µm.

6 Chuẩn bị mẫu

6.1 Chuẩn bị mẫu

Điều quan trọng là phòng thí nghiệm nhận được mẫu thực sự đại diện và không bị hư hỏng hoặc thay đổi trong quá trình vận chuyển hoặc bảo quản. Các mẫu cần được nghiền nhỏ và trộn đều bằng máy nghiền (5.1) và máy trộn kiểu trống (5.2) hoặc quá trình trộn khác mà có thể trộn đồng đều mẫu trước khi lấy ra phần mẫu thử để phân tích.

Trong mọi trường hợp: Nếu mẫu đông lạnh thì cần làm tan băng hoàn toàn trước khi lấy mẫu. Trộn mẫu kỹ trước khi lấy phần mẫu thử để phân tích.

...

6.2 Chiết FB₁ và FB₂

- Lấy 20,0 g mẫu thử cho vào một hộp chứa đủ lớn có nắp đậy, ví dụ: Bình 250 ml (5.5);

- Thêm 200 ml dung môi chiết (4.18), đậy nắp và lắc mạnh bằng tay, để các thành phần của mẫu phân tán đều;

- Đặt bình trên máy lắc (5.4) và lắc trong 120 min; chọn tốc độ sao cho các thành phần được trộn đều mà không bám trên bình;

- Để yên cho mẫu chiết lắng xuống sau khi lắc;

- Thu lấy 5,0 ml dịch chiết lỏng nổi phía trên và pha loãng với PBS (4.16) đến thể tích 50,0 ml và trộn;

- Chuẩn bị phễu lọc (5.10) với bộ lọc vi sợi thủy tinh (5.9) và

- Lọc dịch chiết lỏng từ mẫu đã được pha loãng và thu dịch chiết vào một bình mới (5.5).

Dịch chiết pha loãng đã lọc này có thể được bảo quản ở 4 °C đến 10 °C qua đêm.

...

6.3 Làm sạch

- Dùng IAC (cột ái lực miễn dịch 4.23) cho mỗi một dịch chiết;

- Gắn cột vào bình chứa (5.12), không tháo dung dịch bảo quản cột ra khỏi cột;

- Cho vào bình 25,0 ml dịch chiết pha loãng đã lọc (6.2);

- Mở khóa của cột;

- Để chảy chậm qua cột (tốc độ chảy phải là một giọt trên giây đến hai giọt trên giây);

- Sau khi dịch chiết pha loãng đã chảy hết qua cột, rửa IAC bằng 10 ml PBS (4.16);

- Thổi không khí qua IAC (ví dụ: sử dụng ống bơm lớn nối với cột) để thổi hết PBS dư;

- Đặt bình định mức 5 ml (5.13) hoặc ống đong có chia vạch 5 ml (5.6) bên dưới IAC và thêm 5 x 500 µl metanol (4.2) vào IAC (chỉ khi metanol ở lần thêm trước đã ra hết khỏi cột mới thêm tiếp 500 µl);

...

- Sau khi tất cả metanol (4.2) đã đi qua cột thì thêm 2,0 ml nước (4.1) vào IAC;

- Tiếp tục thu lấy dịch rửa giải vào bình định mức hoặc ống đong, và

- Cẩn thận thổi không khí qua cột để thu được nhiều nhất lượng nước (4.1) đã thêm vào cột.

6.4 Dung dịch thử

- Đối với phương pháp tạo dẫn xuất trước cột: Thêm nước (4.1) vào bình định mức hoặc ống đong cho đủ 5 ml;

- Đối với phương pháp tạo dẫn xuất sau cột: thêm 5 µl axit formic (4.14) và nước (4.1) vào bình định mức hoặc ống đong cho đủ 5 ml;

- Trộn các thành phần trong bình định mức hoặc ống đong và chuyển phần dung dịch thử vào lọ lấy mẫu tự động (5.11).

Dung dịch mẫu thử này có thể được bảo quản ở 4 °C đến 10 °C trong hai ngày.

6.5 Quy trình thêm chuẩn

...

7 Cách tiến hành

7.1 Điều kiện vận hành HPLC

7.1.1 Yêu cầu chung

Các khuyến nghị về điều kiện vận hành tốt với các thiết bị được liệt kê trong 5.16. Có nhiều khả năng, cần phải điều chỉnh nếu đang sử dụng các thiết bị khác thì mới có được độ phân giải và thời gian lưu thích hợp (5.16.3). Những điều chỉnh này có thể bao gồm, nhưng không giới hạn trong những điều chỉnh sau: chương trình bơm mẫu, dung tích bơm, tỷ lệ phần trăm dung môi ở chế độ đẳng dòng hoặc gradient, tốc độ dòng và/hoặc nhiệt độ cột.

7.1.2 Tạo dẫn xuất trước cột

Nếu sử dụng thiết bị nêu trong 5.16, các điều kiện sau đây cho kết quả đạt yêu cầu:

a) chương trình bơm mẫu tự động:

1) lấy 20 µl dung dịch đệm phản ứng tạo dẫn xuất trước cột (4.19.2);

2) lấy 40 µl dung dịch thử (6.4);

...

4) trộn 20 lần, và

5) bơm tất cả.

Tất cả các bước trên đây có thể thực hiện thủ công (điều chỉnh tổng thể tích trong khi vẫn duy trì tỷ lệ các thể tích, nếu cần) nếu bảo đảm chắc chắn rằng dung dịch sẽ được bơm trong vòng 3 min sau khi trộn. Điều quan trọng tiếp là khoảng thời gian từ khi trộn đến khi bơm phải như nhau đối với tất cả mẫu thử và các dung dịch hiệu chuẩn.

b) Thể tích bơm: 80 µl;

c) Nhiệt độ cột: 40 °C;

d) Tốc độ dòng: 1,0 ml/min;

e) Detector huỳnh quang: Bước sóng kích thích λ: 335 nm; phát xạ λ: 440 nm (cần kiểm tra xem các bước sóng đó có đúng là các vị trí cực đại của detector huỳnh quang được sử dụng hay không);

f) Pha động:

1) A: axit formic 0,5 % (4,14) hòa tan trong nước (4.1);

...

g) Thiết lập gradient (HPLC thể tích lưu 0,8 ml) xem bảng 2.

Bảng 2 - Thiết lập gradient cho việc tạo dẫn xuất trước cột

Thời gian (min)

B (%)

69,5

14,01

...

17,01

100

17,02

69,5

Đối với các thiết bị mà có thể tích lưu khác cần điều chỉnh gradient để đạt được độ phân giải như độ phân giải nêu ra trong Phụ lục A. Mục tiêu là cần đạt được hệ số rửa giải đối với FB₁ k > 3.

7.1.3 Tạo dẫn xuất sau cột

Hướng dẫn lắp ráp hệ thống (5.16.5):

...

Cổng thứ hai của bộ trộn chữ T được nối với máy bơm (xem 5.16.5) để cấp thuốc thử. Ống nối này nên sử dụng một được làm bằng một đoạn ống PEEK có đường kính trong 0,005 inch (xem 5.16.5) để tạo ra một áp lực ngược sao cho bơm cấp thuốc thử hoạt động đúng cách. Điều quan trọng nhất là dòng chảy của thuốc thử tạo phản ứng phải không được có xung. Chỉ một xung nhỏ cũng có thể gây ra sự tắt dần áp lực giữa bơm và tạo áp suất ngược bên trong ống nối PEEK. Để phòng tránh hiện tượng này có thể sử dụng ống nối PEEK đường kính trong lớn hơn. Cổng ra thứ ba - cổng chính của bộ trộn chữ T - được nối qua cuộn phản ứng rồi nối vào detector huỳnh quang. Chiều dài, cũng chính là thể tích của cuộn phản ứng phải đảm bảo được sự cân bằng giữa việc duy trì độ phân giải của cột sắc ký (ngắn) và bảo đảm phản ứng xảy ra hoàn toàn (dài). Đường kính bên trong của cuộn phản ứng ít quan trọng. Nếu chọn đường kính quá nhỏ thì sẽ tạo ra áp suất ngược. Nếu sử dụng cuộn phản ứng là ống PEEK dài 2,5 m, đường kính trong 0,02 inch thì sẽ thu được kết quả khả quan.

Khi sử dụng thiết bị nêu trong 5.16, các điều kiện sau đây sẽ cho kết quả khả quan:

a) Thể tích bơm: 50 µl

b) Nhiệt độ cột: 45 °C

c) Tốc độ dòng: 1,2 ml/min (pha động); 0,45 ml/min (thuốc thử tạo phản ứng sau cột (4.19.1)).

d) Detector huỳnh quang: Kích thích λ: 335 nm; Phát xạ λ: 440 nm (cần kiểm tra xem các bước sóng đó có đúng là các vị trí cực đại của detector huỳnh quang được sử dụng hay không).

e) Pha động

1) A: axit formic 0,1 % (4.14) pha trong nước (4.1);

2) B: axit formic 0,1 % (4.14) pha trong Axetonitril (4.3).

...

Bảng 3 - Cài đặt gradient để tạo dẫn xuất sau cột

Thời gian (min)

B (%)

13,01

...

16,01

Việc tách là đẳng dòng nhưng để tránh việc tích tụ các thành phần nền mẫu, nên cần có đoạn cài đặt đến 95 % B. Tỷ lệ phần dung môi phải được điều chỉnh sao cho hệ số rửa giải FB₁ là k > 2.

7.2 Xác định các fumonisin trong dung dịch thử

Bơm các lượng dung dịch thử (6.4) vào máy sắc ký sử dụng các điều kiện tương tự như khi chạy các dung dịch hiệu chuẩn (4.22).

7.3 Trình tự chạy sắc ký

...

7.4 Hiệu chuẩn

Dựng đường chuẩn: lấy tín hiệu (diện tích hoặc chiều cao các pic) của tất cả các dung dịch hiệu chuẩn đã xác định được đối với các nồng độ tương ứng cho FB₁ và FB₂ riêng rẽ. Không sử dụng giá trị trung bình của nhiều lần bơm. Với sự ước lượng hồi quy tuyến tính của đồ thị nối các điểm trên tọa độ để vẽ được hai đường chuẩn ước tính cho hai chất (FB₁ và FB₂). Kiểm tra sự có nghĩa của hệ số chặn và độ tuyến tính.

7.5 Nhận biết pic

Việc nhận biết các pic FB₁ hoặc FB₂ trong dung dịch thử bằng cách đối chiếu thời gian lưu của dung dịch thử với thời gian lưu của các dung dịch hiệu chuẩn gần nhất trong mẻ phân tích. Tín hiệu (diện tích hoặc chiều cao) của FB₁ hoặc FB₂ trong dung dịch thử phải nằm trong khoảng hiệu chuẩn. Nếu như tín hiệu FB₁ và/hoặc FB₂ trong dung dịch thử vượt quá các tín hiệu cao nhất của dung dịch hiệu chuẩn, thì cần pha loãng dung dịch thử với dịch pha loãng (4.17) để đưa nồng độ của dung dịch thử vào trong khoảng tuyến tính của nồng độ hiệu chuẩn sau đó tiến hành phân tích lại. Hệ số pha loãng phải được hợp nhất và đưa vào mọi phép tính sau đó.

8 Xác định nồng độ

Sử dụng đường chuẩn ước tính và các hệ số độ dốc và hệ số chặn ước tính của đường hồi quy tuyến tính (7.4) để tính ra các nồng độ FB₁ (C_T _(FB1)) và FB₂ (C_T _(FB2)) trong các dung dịch thử (6.4) từ giá trị trung bình cộng kết quả của hai lần bơm mẫu như sau:

(ng/ml)

(1)

...

(ng/ml)

(2)

Nếu dung dịch thử đã phải pha loãng vì tín hiệu nằm ngoài dải nồng độ hiệu chuẩn (7.5), thì nhân các nồng độ tính toán của FB₁ (c_T ₍_FB1₎) và FB₂ (c_T_(FB2)) với hệ số pha loãng.

Để tính được các phần khối lượng (w_SMP) của các chất phân tích trong các vật liệu ban đầu, sử dụng công thức sau:

(ng/g hoặc µg/kg)

Trong đó:

là nồng độ tính được (ng/ml) của FB₁ (1) hoặc FB₂ (2), có thể được điều chỉnh pha loãng;

...

là khối lượng (g) của vật liệu thử (mẫu) đã dùng để chiết (20,0 g);

V₁

là tổng thể tích (ml) của dung môi chiết (200,0 ml);

V₂

là thể tích (ml) của phần dịch chiết đã lọc được dùng để pha loãng (5,0 ml);

V₃

là tổng thể tích (ml) của dịch chiết thô đã pha loãng (50,0 ml);

V₄

là thể tích (ml) của phần dịch chiết đã lọc và pha loãng được dùng cho IAC (25,0 ml);

...

là tổng thể tích (ml) của dung dịch thử (5,0 ml).

Nếu khối lượng mẫu thử và các thể tích được mô tả ở đây được giữ nguyên, thì phương trình (3) trên có thể được đơn giản thành;

w_SMP = c_T x 20 (µg/kg)

(4)

Nếu kết quả của Công thức (4) lớn hơn 10 000 µg/kg hoặc nếu trước đó biết mức độ mẫu thử bị nhiễm có thể vượt quá giá trị đó, thì pha loãng dịch chiết (6.2) với hệ pha loãng bổ sung (hệ số pha loãng bổ sung 50/10 = 5). Công thức đơn giản sau đó sẽ là:

W_SMP = c_T x 20 x 5 = c_T x 100 (µg/kg)

(5)

Thực hiện các tính toán như trên cho FB₁ và FB₂. Tổng của cả hai sẽ được tính như sau:

W_SMP = w_{SMP, FB1} + w_{SMP,
FB2} (µg/kg)

...

9 Độ chụm

9.1 Nghiên cứu cộng tác

Chi tiết của việc nghiên cứu liên phòng thí nghiệm về độ chính xác của phương pháp được thể hiện trong^[3]. Các giá trị thu được từ nghiên cứu liên phòng thí nghiệm này có thể không áp dụng cho các dải nồng độ và nền mẫu khác với dải nồng độ và nền mẫu đã nêu.

9.2 Độ lặp lại

Chênh lệch tuyệt đối giữa hai kết quả thử độc lập, thu được bằng cách sử dụng cùng một phương pháp, trên cùng một chất liệu thử trong cùng một phòng thí nghiệm do cùng một người thực hiện, sử dụng cùng một thiết bị trong một khoảng thời gian ngắn, không quá 5 % các trường hợp vượt quá giới hạn lặp lại r.

Bảng 4 - Độ chụm của dữ liệu lặp lại

= 3 110 µg/kg

r = 229 µg/kg

= 5 000 µg/kg

...

= 5 600 µg/kg

r = 826 µg/kg

= 8 200 µg/kg

r = 809 µg/kg

= 16 000 µg/kg

r = 1 120 µg/kg

Mối tương quan giữa r và có thể được ước lượng bằng công thức sau:

r = 2,8 x 0,031 x

(7)

...

9.3 Độ tái lập

Chênh lệch tuyệt đối giữa hai kết quả thử độc lập, thu được bằng cách sử dụng cùng một phương pháp trên cùng một chất liệu thử nghiệm trong các phòng thí nghiệm khác nhau với những người khác nhau thực hiện, sử dụng các thiết bị khác nhau, không quá 5 % các trường hợp vượt giới hạn tái lập R.

Bảng 5 - Độ chụm của dữ liệu tái lập

= 3 110 µg/kg

R = 1 650 µg/kg

= 5 000 µg/kg

R = 2 140 µg/kg

= 5 600 µg/kg

R = 2 420 µg/kg

...

R = 3 450 µg/kg

= 16 000 µg/kg

R = 8 980 µg/kg

Mối tương quan giữa R và có thể được ước lượng một cách đầy đủ bằng công thức sau:

R = 2,8 x 0,18 x

(8)

nghĩa là độ lệch chuẩn tương đối tái lập là không đổi trong dải làm việc.

10 Báo cáo kết quả

Báo cáo thử nghiệm phải ghi rõ:

...

b) viện dẫn tiêu chuẩn này;

c) ngày lấy mẫu và kiểu loại xử lý mẫu (nếu biết);

d) ngày nhận mẫu;

e) ngày phân tích;

f) kết quả kiểm tra thu được và đơn vị biểu thị kết quả;

g) nếu kiểm tra độ lặp lại thì nêu kết quả cuối cùng thu được;

h) các bất thường quan sát được trong quá trình thử nghiệm;

i) các thao tác không quy định trong tiêu chuẩn này hoặc được coi là tùy chọn, mà có thể ảnh hưởng đến kết quả.

...

(tham khảo)

Dữ liệu về độ chụm

Các dữ liệu sau đây thu được trong một nghiên cứu liên phòng thí nghiệm^[3] theo Hướng dẫn của AOAC về thủ tục nghiên cứu hợp tác để đánh giá xác nhận các đặc tính của phương pháp phân tích^[2].

Bảng A.1 - Dữ liệu về độ chụm

Mẫu

Thức ăn chăn nuôi

...

Năm thực hiện hợp tác nghiên cứu

2008

Số lượng phòng thí nghiệm tham gia

...

Số lượng phòng thí nghiệm bị loại ra

Số phòng thí nghiệm không tuân thủ

...

Số kết quả được chấp nhận

...

Giá trị trung bình (µg/kg)

3 110

5 000

5 600

8 200

16 000

Độ lệch chuẩn lặp lại, s_r, (µg/kg)

81,9

101

...

289

398

Độ lệch chuẩn tương đối lặp lại, RSD_r, (%)

2,6

2,0

5,3

3,5

2,5

Giới hạn lặp lại r^a, (µg/kg)

...

282

826

809

1 120

Độ lệch chuẩn tái lập, s_R, (µg/kg)

589

766

863

1 230

...

Độ lệch chuẩn tương đối tái lập, RSD_r, (%)

HORRAT

1,4

1,2

...

1,3

1,9

Giới hạn tái lập, R^b (µg/kg)

1 650

2 140

2 420

3 450

8 980

Độ thu hồi (%)

...

n.a.^c

^a r = 2,8 x S_r

^b R = 2,8 x S_R

^c không áp dụng

Bảng A.2 - Thành phần vật liệu

Vật liệu thử

...

Phần

Các thành phần chủ yếu

Mẫu trắng

Thức ăn cho thỏ

ngũ cốc, hạt, các sản phẩm phụ của cây trồng, rau, khoáng chất

Thức ăn cho ngựa

yến mạch, đại mạch, bột mì, mảnh ngô, mảnh đậu, sợi, dầu, gỉ mật

...

đậu Hà Lan, đậu nành rang, lúa mì, lúa mạch, tinh bột sắn, cải bắp, mỡ động vật, ngô, muối

Loại B

Mẫu trắng

Xem "Mẫu trắng".

Bột ngô

Ngô nhiễm tự nhiên

...

Mẫu trắng

Xem "Mẫu trắng".

Bột ngô

Ngô nhiễm tự nhiên

Loại SH

Bột ngô

...

Bảng dưới đây thống kê các dữ liệu về độ chính xác được tính sau khi hiệu chỉnh các số liệu được báo cáo của mỗi phòng thí nghiệm với mức độ thu hồi trung bình rõ ràng của phòng thí nghiệm tương ứng. Bảng này được thêm vào chỉ phục vụ mục đích thông tin.

Bảng A.3 - Dữ liệu về độ chính xác sau khi điều chỉnh mức thu hồi

Mẫu

Thức ăn chăn nuôi

Thức ăn chăn nuôi

Năm thực hiện hợp tác nghiên cứu

...

2008

Số lượng phòng thí nghiệm tham gia

...

Số lượng phòng thí nghiệm bị loại ra

Số phòng thí nghiệm không tuân thủ

...

Số kết quả được chấp nhận

Giá trị trung bình (µg/kg)

...

6 760

7610

11 100

21 700

Độ lệch chuẩn lặp lại, s_r, (µg/kg)

113

148

389

397

...

Độ lệch chuẩn tương đối lặp lại, RSD_r, (%)

2,7

2,2

5,1

3,6

2,5

Giới hạn lặp lại r ^a, (µg/kg)

315

413

...

1 110

1 520

Độ lệch chuẩn tái lập, s_R, (µg/kg)

814

816

1 670

1 740

5 560

Độ lệch chuẩn tương đối tái lập, RSD_r, (%)

...

HORRAT

1,5

1,0

1,9

1,4

...

Giới hạn tái lập, R^b (µg/kg)

2 280

2 290

4 660

4 880

15 600

Độ thu hồi (%)

n.a^c

100

...

100

n.a.^c

^a r = 2,8 x S_r

^b R = 2,8 x S_R

^c không áp dụng

Phụ lục B

(tham khảo)

Ví dụ về các sắc ký đồ

...

Hình B.1 - Ví dụ sắc ký đồ có tạo dẫn xuất sau cột và các điều kiện quy định

Mẫu trắng thức ăn chăn nuôi được thêm chuẩn ở mức khoảng 5 mg/kg đối với tổng của FB₁ và FB₂. IAC rửa giải được làm khô và được hòa với 0,5 ml pha động.

Hình B.2 - Ví dụ sắc ký đồ có tạo dẫn xuất trước cột và các điều kiện quy định

Mẫu trắng thức ăn chăn nuôi được thêm chuẩn ở mức khoảng 5 mg/kg đối với tổng của FB₁ và FB₂. IAC chất rửa giải được làm khô và hòa với 0,5 ml pha động

Hình B.3 - Ví dụ sắc ký đồ có tạo dẫn xuất trước cột và các điều kiện quy định

Mẫu trắng thức ăn chăn nuôi được thêm chuẩn ở mức khoảng 5 mg/kg đối với tổng của FB₁ và FB₂ IAC dịch rửa giải được làm khô và hòa với 0,5 ml pha động.

Thức ăn chăn nuôi bị nhiễm tự nhiên ở mức khoảng 6 mg/kg cho tổng của FB₁ và FB₂. IAC rửa giải không được làm khô.

...

Thư mục tài liệu tham khảo

[1] Quy định của Ủy ban (EC) số 152/2009 ngày 27 tháng 1 năm 2009 đưa ra các phương pháp lấy mẫu và phân tích để kiểm soát chính thức thức ăn, Tạp chí chính thức của Liên minh châu Âu, 26.2.2009, L54, trang. 1-130.

[2] AOAC International 1995, Chương trình Phương pháp AOAC, trang. 23-51

[3] Báo cáo theo sát nghiên cứu hợp tác: Xác định hỗn hợp của Fumonisin B₁ và B₂ đối với thức ăn chăn nuôi và bột ngô bằng phương pháp rửa cột ái lực miễn dịch và sắc ký lỏng hiệu năng cao (HPLC) detector huỳnh quang, Breidbach, A., Bouten, K. , Kroeger, K., Stroka, J .. Ủy ban châu Âu

- Các nghiên cứu khoa học và kỹ thuật, EUR 23941 EN, ISSN 1018-5593.

http://publications.jrc.ec.europa.eu/repository/handle/.

Nội dung văn bản đang được cập nhật

Tiêu chuẩn quốc gia TCVN 12600:2018 (EN 16006:2011) về Thức ăn chăn nuôi - Xác định tổng fumonisin B1 và B2 trong thức ăn hỗn hợp bằng phương pháp làm sạch ái lực miễn dịch và HPLC pha đảo với detector huỳnh quang có tạo dẫn xuất trước cột hoặc sau cột

Số hiệu:	TCVN12600:2018
Loại văn bản:	Tiêu chuẩn Việt Nam
Nơi ban hành:	***
Người ký:	***
Ngày ban hành:	01/01/2018
Ngày hiệu lực:	Đã biết
Tình trạng:	Đã biết

Văn bản được hướng dẫn - [0]

Văn bản được hợp nhất - [0]

Văn bản bị sửa đổi bổ sung - [0]

Văn bản bị đính chính - [0]

Văn bản bị thay thế - [0]

Văn bản được dẫn chiếu - [3]

Văn bản được căn cứ - [0]

Văn bản liên quan ngôn ngữ - [0]

Văn bản đang xem

Văn bản liên quan cùng nội dung - [4]

Văn bản hướng dẫn - [0]

Văn bản hợp nhất - [0]

Văn bản sửa đổi bổ sung - [0]

Văn bản đính chính - [0]

Văn bản thay thế - [0]

- 14 +

Tải Văn bản tiếng Việt
Tải Văn bản gốc

Chưa có Video

Hãy đăng nhập hoặc đăng ký Tài khoản để biết được tình trạng hiệu lực, tình trạng đã bị sửa đổi, bổ sung, thay thế, đính chính hay đã được hướng dẫn chưa của văn bản và thêm nhiều tiện ích khác