5.2.3.2.2  Chuẩn bị

Hòa tan natri clorid vào trong nước bằng cách vừa khuấy vừa đun nóng. Phân phối vào các bình có thể tích thích hợp. Hấp tiệt khuẩn ở 121 °C trong 15 min.

5.2.3.2.3  Thành phần 2

Tryptone, từ casein thủy phân bởi pancreatin

1,0 g

Natri clorid

8,5 g

Nước

1 000 ml

...

...

...

Hòa tan các thành phần vào trong nước bằng cách vừa khuấy vừa đun nóng. Phân phối môi trường vào các bình có thể tích thích hợp. Hấp tiệt khuẩn ở 121 °C trong 15 min. Sau khi hấp và để nguội, pH môi trường phải đạt khoảng 7,0 ± 0,2 khi đo ở nhiệt độ phòng.

5.2.3.3  Dung dịch để chuẩn bị cho hỗn dịch bào tử A. brasiliensis: dung dịch polysorbat

Chuẩn bị dung dịch polysorbat 80 (nồng độ 0,5 g/l). Hòa tan bằng cách vừa khuấy vừa đun nóng đến khi dung dịch tan hoàn toàn. Phân phối vào các bình có thể tích thích hợp. Hấp tiệt khuẩn ở 121 °C trong 15 min.

5.2.4  Dung dịch trung hòa

5.2.4.1  Quy định chung

Sự phù hợp và hiệu quả của chất trung hòa phải được chứng minh đối với các chủng và công thức thử nghiệm như mô tả trong mục 5.5.

Các chất trung hòa thường được sử dụng được mô tả trong mục 5.2.4. Các ví dụ về các chất trung hòa thích hợp khác được đưa ra trong Phụ lục C (xem bảng C.1). Môi trường Eugon LT100 lỏng cải tiến có thể được chọn sử dụng thay thế

5.2.4.2  Môi trường lỏng Eugon LT 100

5.2.4.2.1  Quy định chung

...

...

...

5.2.4.2.2  Thành phần

Casein thủy phân bởi pancreatin

15 g

Bột đậu tương thủy phân bởi papain

5 g

Natri clorid

4g

...

...

...

L-cystin

0,7 g

Natri sulphit

0,2 g

Glucose

5,5 g

...

...

...

1 g

Polysorbat 80

5 g

Octoxynol 9

1 g

Nước

...

...

...

5.2.4.2.3  Chuẩn bị

Hòa tan lần lượt polysorbat 80, octoxynol 9 và lecithin từ trứng trong nước sôi cho đến khi tan hoàn toàn. Thêm các thành phần còn lại vào hỗn hợp vừa thu được bằng cách khuấy và đun nóng. Phân phối môi trường vào các bình có thể tích thích hợp. Hấp tiệt khuẩn ở 121 °C trong 15 min. Sau khi hấp, trộn đều trong khi chất lỏng vẫn còn nóng để hòa tan lại các chất đã lắng. Sau khi hấp và để nguội, pH môi trường phải đạt khoảng 7,0 ± 0,2 khi đo ở nhiệt độ phòng.

5.2.4.3  Môi trường Eugon LT lỏng cải tiến

5.2.4.3.1  Thành phần

Casein thủy phân bởi prancreatin

15,0 g

Bột đậu tương thủy phân bởi papain

...

...

...

L-cystine

0,7 g

Natri clorid

4,0 g

Natri sulfit

0,2 g

...

...

...

Glucose

5,5 g

Lecithin từ trứng

1,0 g

Polysorbat 80

5,0 g

...

...

...

1,56 g

Nước

1 000 ml

5.2.4.3.2  Chuẩn bị

Hòa tan lần lượt từng thành phần polysorbate 80 và lecithin từ trứng trong nước sôi để tan hoàn toàn. Hòa tan các thành phần khác vào hỗn hợp thu được bằng cách vừa khuấy vừa đun nóng. Phân phối vào các bình có thể tích thích hợp. Hấp tiệt khuẩn ở 121 °C trong 15 min. Sau khi hấp và để nguội, pH phải đạt khoảng khoảng 7,0 ± 0,2 khi đo ở nhiệt độ phòng.

5.2.5  Môi trường nuôi cấy

5.2.5.1  Quy định chung

...

...

...

5.2.5.2  Môi trường nuôi cấy cho vi khuẩn: Môi trường thạch Tryptic đậu tương (TSA) hoặc môi trường thạch casein đậu tương

5.2.5.2.1  Thành phần

Casein thủy phân bởi pancreatin

15 g

Bột đậu tương thủy phân bởi papain

 5 g

Natri clorid

...

...

...

Thạch

15 g

Nước

1 000 ml

5.2.5.2.2  Chuẩn bị

Hoà tan các thành phần trên hoặc môi trường khô trong nước bằng cách vừa khuấy vừa đun nóng. Phân phối môi trường vào các bình có thể tích phù hợp. Hấp tiệt khuẩn ở 121 °C trong 15 min. Sau khi hấp, trộn đều trong khi chất lỏng vẫn còn nóng để hòa tan lại các chất đã lắng. Sau khi hấp và để nguội, pH môi trường phải đạt khoảng 7,3 ± 0,2 khi đo ở nhiệt độ phòng.

...

...

...

5.2.5.3.1  Thành phần

Dextrose

40,0 g

Mô động vật thủy phân bởi peptic

5,0 g

Casein thủy phân bởi pancreatin

5,0 g

...

...

...

Thạch

15,0 g

Nước

1 000 ml

5.2.5.3.2  Chuẩn bị

Hoà tan các thành phần trên hoặc môi trường hoàn chỉnh khô trong nước bằng cách vừa khuấy vừa đun nóng. Phân phối môi trường vào các bình có thể tích phù hợp. Hấp tiệt khuẩn ở 121 °C trong 15 min. Sau khi hấp và để nguội, pH môi trường phải đạt khoảng 5,6 ± 0,2 khi đo ở nhiệt độ phòng.

5.2.5.4  Môi trường nuôi cấy cho A. brasiliensis: thạch khoai tây - dextrose (PDA)

...

...

...

Nước chiết khoai tây

200,0 g

Dextrose

20,0 g

Thạch (xem 5.2.5.4.2, chú thích 1)

20,0 g

...

...

...

1 000 ml

5.2.5.4.2  Chuẩn bị

Hoà tan các thành phần trên hoặc môi trường khô hoàn chỉnh trong nước bằng cách vừa khuấy vừa đun nóng. Phân phối môi trường vào các bình có thể tích thích hợp. Hấp tiệt khuẩn ở 121 °C trong 15 min. Sau khi hấp và để nguội, pH môi trường phải đạt khoảng 5,6 ± 0,2 khi đo ở nhiệt độ phòng.

CHÚ THÍCH 1: Các loại môi trường dạng hoàn chỉnh khô thương mại có chứa ít hơn 20 g/l thạch có thể được bổ sung thêm thạch đến nồng độ cuối cùng là 20 g/l nếu cần.

5.3  Chủng vi sinh vật

Thử nghiệm được tiến hành sử dụng các chủng vi sinh vật sau đây như:

- Pseudomonas aeruginosa ATCC^®9027™[2]⁾ (chủng tương đương: CIP^®82.118™[3]⁾ hoặc NCIMB^®8626™[4]⁾ hoặc NBRC^®13275™[5]⁾ hoặc KCTC^®2513™[6]⁾ hoặc các chủng quốc gia khác tương đương);

- Staphylococcus aureus A7CC^®6538™ (chủng tương đương: CIP^®4.83™ hoặc NCIMB^®9518™ hoặc NBRC^®13276™ hoặc KCTC^®3881™ hoặc NCTC^®10788™[7]⁾ hoặc các chủng quốc gia khác tương đương);

...

...

...

- Candida albicans ATCC^®10231™ (chủng tương đương: IP^®48.72™[8]⁾ hoặc NCPF^®3179™[9]⁾ hoặc NBRC^®1594™ hoặc KCTC^®7965™ hoặc các chủng quốc gia khác tương đương);

- Aspergillus brasiliensis (tên khác A. niger) ATCC^®16404™ (chủng tương đương: IP^®1431 hoặc IMI^®14900™[10]⁾ hoặc NBRC^® hoặc KCTC^®6196™ hoặc các chủng quốc gia khác tương đương).

Các chủng trên cần được hoàn nguyên theo quy trình được đưa ra bởi nhà cung cấp các chủng.

Các chủng có thể được lưu giữ trong phòng thí nghiệm theo (EN 12353).

Chuẩn bị và đếm chủng vi sinh vật

5.4  Chuẩn bị và đếm chủng vi sinh vật

5.4.1  Quy định chung

Để thực hiện các phép thử, sử dụng các chủng bảo quản trong phòng thí nghiệm (5.3) để thu được chủng gốc và các chủng làm việc.

Chủng gốc là chủng đồng nhất thu được bằng cách cấy chuyền chủng bảo quản (trong ống dùng một lần hoặc dạng hạt), vào các ống thạch nghiêng hoặc đĩa Sau khi ủ, chủng gốc có thể giữ trong khoảng từ 2 °C đến 8 °C trong hai tháng và được sử dụng để tạo chủng làm việc.

...

...

...

Chủng gốc và chủng làm việc phải được chuẩn bị trong cùng một điều kiện sinh trưởng (môi trường, điều kiện nuôi cấy) (5.4.2 và 5.4.3).

CHÚ THÍCH 1: Việc giới hạn số lần cấy truyền và việc sử dụng các chủng đồng nhất thay vì các khuẩn lạc riêng rẽ sẽ làm giảm nguy cơ thay đổi tính nhạy cảm của các chủng. Việc chuẩn hóa các điều kiện sinh trưởng và quá trình nuôi cấy sẽ tăng khả năng lặp lại của phép thử.

CHÚ THÍCH 2: Tránh rã đông nhiều lần khi sử dụng các bình chứa đa liều (ví dụ: bình chứa có nhiều hạt đưa ra khỏi tủ đông để lấy một hạt, sau đó được để lại trong tủ đông).

5.4.2  Chuẩn bị hỗn dịch vi khuẩn và hỗn dịch Candida albicans

5.4.2.1  Để chuẩn bị chủng làm việc, cấy chuyền chủng cấp 1 từ chủng gốc bằng cách cấy ria trên các ống thạch nghiêng hoặc đĩa (TSA cho vi khuẩn, SDA cho C. albicans) để được chủng thuần chủng, ủ ở 32,5 °C ± 2,5 °C trong 18 h đến 24 h.

Chuẩn bị theo cách tương tự để được chủng cấp hai từ chủng cấp một, và ủ ở 32,5 °C ± 2,5 °C trong 18 h đến 24 h. Chủng cấp ba được chuẩn bị tương tự từ chủng cấp hai. Chủng cấp hai và cấp ba (nếu được thực hiện) tạo thành chủng làm việc.

Nếu chủng cấp hai không thể nuôi cấy đúng thời điểm, thì chủng cấp một đã được nuôi cấy trong 48 h ở tủ ấm 32,5 °C ± 2,5 °C được sử dụng để cấy chuyền thành chủng cấp hai. Trong trường hợp này, cấy chuyền tiếp thành chủng cấp ba từ 18 h đến 24 h và sử dụng chủng này trong thử nghiệm.

LƯU Ý: Không sử dụng chủng cấy truyền 4 lần từ chủng gốc ban đầu cho phép thử

5.4.2.2  Lấy 10 ml dung dịch pha loãng (5.2.3.2) cho vào bình chứa đã tiệt khuẩn thích hợp với khoảng 5 g bi thủy tinh vô khuẩn. Chuyển một vòng que cấy tế bào gặt được từ đĩa môi trường vào dung dịch pha loãng, dùng đầu que cấy đánh đều tế bào vào thành ống để phân tán đều tế bào trong dung dịch pha loãng.

...

...

...

5.4.2.4  Điều chỉnh số lượng tế bào trong hỗn dịch từ 1 x 10⁷ CFU/ml đến 1 x 10⁸ CFU/ml (vi khuẩn) hoặc 1 x 10⁶ CFU/ml đến 1 x 10⁷ CFU/ml (C. albicans) bằng cách sử dụng dịch pha loãng (5.2.3.2) và phương pháp định lượng thích hợp (ví dụ sử dụng máy quang phổ, xem Phụ lục C trong ISO 21148 : 2017,). Sử dụng hỗn dịch chuẩn này trong vòng 2 h.

5.4.2.5  Tại thời điểm thử nghiệm, kiểm tra số lượng ban đầu của hỗn dịch chủng, N. Thực hiện các bước pha loãng mười lần đối với hỗn dịch chuẩn bằng dung dịch pha loãng (5.2.3.2). Thực hiện đếm chủng bằng cách lấy 1 ml hỗn dịch đã được pha loãng phù hợp lần lượt cho vào đĩa petri (5.6.2) thêm môi trường TSA đối với vi khuẩn và môi trường SDA đối với C.albicans. Mỗi nồng độ sử dụng 2 dĩa petri, mỗi đĩa petri 1 ml. Ủ các dĩa ở 32,5 °C ± 2,5 °C trong thời gian từ 24 h đến 48 h.

5.4.3  Chuẩn bị hỗn dịch bào từ A. brasiliensis.

5.4.3.1  Để thu được chủng làm việc, sử dụng một chủng gốc (trên PDA) không được quá 2 tháng tuổi và chuẩn bị một hỗn dịch chủng trong dung dịch pha loãng (5.2.3.3). cấy trải hỗn dịch chủng lên bề mặt môi trường PDA trong bình Roux (hoặc sử dụng các dĩa Petri), để có được một chủng nuôi cấy đồng nhất. Ủ ở 22,5 °C ± 2,5 °C trong 7 ngày đến 11 ngày.

5.4.3.2  Sau khi ủ, chuyển 10 ml dung dịch polysorbat (5.2.3.3) lên bề mặt môi trường PDA. Nhẹ nhàng tách các bào tử ra khỏi bề mặt chủng nuôi cấy, ví dụ như sử dụng thìa hoặc bi thủy tinh. Chuyển hỗn dịch vào bình thích hợp và khuấy nhẹ nhàng trong khoảng một min với sự có mặt của bi thủy tinh. Lọc hỗn dịch qua bộ lọc thủy tinh có độ rỗng xốp 2 (tức là 40 µm ÷ 100 µm).

5.4.3.3  Tiến hành kiểm tra bằng kính hiển vi (phóng đại x 400) để phát hiện sự hiện diện của bào tử nảy mầm hoặc các mảnh nấm.

— Nếu có bào tử nảy mầm, thì phải loại bỏ hỗn dịch vừa mới thu được.

— Nếu sợi nấm có mặt trong một phần mười, rửa hỗn dịch bằng cách ly tâm với tốc độ (theo vận hành của thiết bị) trong 20 min. Rửa các bào tử ít nhất hai lần bằng cách phân tán chúng lại trong dung dịch polysorbate (5.2.3.3) và ly tâm.

5.4.3.4  Điều chỉnh số lượng bào tử trong hỗn dịch đến khoảng 1 x 10⁶ bào tử/ml đến 1 x 10⁷ bào tử/ml bằng dung dịch pha loãng (5.2.3.3) và bất kỳ phương pháp nào thích hợp.

...

...

...

Hỗn dịch phải được sử dụng trong cùng một ngày làm việc hoặc có thể được sử dụng vào ngày hôm sau nếu được bảo quản trong khoảng từ 2 °C đến 8 °C, nhưng tại thời điểm thử nghiệm, phải kiểm tra sự hiện diện của bào tử nảy mầm.

5.4.3.5  Tại thời điểm thử nghiệm, kiểm tra số lượng ban đầu của hỗn dịch chủng, N. Thực hiện pha loãng mười lần hỗn dịch chủng trong dịch pha loãng (5.2.3.3). Thực hiện bước đếm bằng cách lấy 1 ml hỗn dịch đã được pha loãng phù hợp cho vào đĩa petri (5.6.2), thêm môi trường PDA vào đĩa. Mỗi nồng độ sử dụng 2 đĩa petri, mỗi đĩa chứa 1 ml (sử dụng số lượng dĩa petri thích hợp). Ủ các đĩa ở 22.5 °C ± 2,5 °C trong 3 ngày đến 5 ngày.

5.5  Chứng minh hiệu quả của chất trung hòa

5.5.1  Nguyên tắc

Xác định hiệu quả của chất trung hòa để trung hòa hoạt tính kháng khuẩn của mẫu thử với sự có mặt của mỗi vi sinh của công thức được kiểm tra mà không ức chế các vi sinh thử nghiệm.

Cấy vào dung dịch chất trung hòa một lượng hỗn dịch chủng có nồng độ xác định (khoảng 10³ CFU/ml) với sự có mặt của mẫu thử (ống mẫu thử) và không có mặt của mẫu thử (ống đối chứng dương). Hiệu quả của chất trung hòa được chứng minh nếu kết quả số lượng vi sinh vật đếm lại từ ống hỗn dịch chủng ban đầu Nv và từ ống đối chứng dương Nvn (hỗn hợp của dung dịch chất trung hòa với dung dịch pha loãng, không có mặt mẫu) là tương đương nhau, và nếu kết quả đếm từ ống mẫu thử Nvf (hỗn hợp của dung dịch chất trung hòa và mẫu) đạt ít nhất 50 % so với kết quả đếm từ ống đối chứng dương Nvn (5.5.4).

5.5.2  Cách tiến hành

Thực hiện phép thử với từng chủng riêng biệt.

a) Chuẩn bị 1 dãy pha loãng đối với hỗn dịch chủng chuẩn vi sinh vật: N khoảng 1 x 10⁷ CFU/ml đến 1 x 10⁸ CFU/ml đối với vi khuẩn và khoảng 1x10⁸ CFU/ml đến 1 x 10⁷ CFU/ml đối với C. albicans và A. brasiliensis (5.4.2 và 5.4.3) để có được một hỗn dịch có chứa khoảng 103 CFU/ml (vi sinh vật).

...

...

...

c) Để ống thử nghiệm ở 30 min ±15 min ở nhiệt độ phòng. Tiến hành một “ống đối chứng dương” song song với cùng một chất trung hòa, thay thế mẫu đã được thử nghiệm với 1 ml dịch pha loãng (5.2.3).

d) Cấy vào “ống mẫu thử” (pha loãng mười lần và nếu cần thiết pha loãng thêm như hướng dẫn ở mục b) và cấy 1 ml dung dịch chủng chuẩn (a) vào “ống đối chứng dương”, (thể tích cuối cùng là 11 ml). Trộn đều.

e) Chuẩn bị "ống hỗn dịch chủng ban đầu": Thêm 1 ml dung dịch chủng (a) vào 10 ml dung dịch pha loãng (thể tích cuối cùng là 11 ml). Trộn đều.

f) Đếm 2 lần bằng cách thêm 1 ml mỗi dung dịch ("ống mẫu thử","ống đối chứng dương" và "ống hỗn dịch chủng ban đầu") vào một lượng môi trường thạch (TSA cho vi khuẩn hiếu khí, SDA cho C. albicans và PDA cho A. brasiliensis). Khuyến cáo nên sử dụng lượng chủng chuẩn thêm vào là 1 ml nhằm tăng cường độ chính xác của phép đếm ("ống mẫu thử", "ống đối chứng dương" và "ống hỗn dịch chủng ban đầu")

g) Ủ ở 32,5 °C ± 2,5 °C trong 48 h đến 72 h đối với vi khuẩn hiếu khí và C.albicans và ủ ở 22,5 °C ± 2,5 °C trong 3 ngày đến 5 ngày đối với A. brasiliensis.

5.5.3  Công thức tính

Tính số lượng vi sinh vật có trong “ống hỗn dịch chủng ban đầu”: N_v (CFU/ml) (5.5.2.5).

—  là số khuẩn lạc trung bình đếm được trong hai lần lặp lại, với 1 ml dung dịch trong 1 đĩa.

— N_v khoảng 100 CFU/ml.

...

...

...

Tính số lượng vi sinh vật có trong “ống kiểm soát” (dung dịch pha loãng trộn với chất trung hòa, không có mẫu thử): N_vn (CFU/ml).

N_vf và N_vn là số khuẩn lạc trung bình đếm được trên 2 đĩa lặp lại của 1 ml dung dịch mẫu thử hoặc dung dịch kiểm soát.

5.5.4  Giải thích kết quả và kết luận hiệu quả của chất trung hòa

Hiệu quả của chất trung hòa được chứng minh nếu N_vf ≥ 0,5 N_vn và nếu N_vn gần bằng N_v.

Nếu N_vf không gần bằng N_v, chất trung hòa được coi là có hại đối với vi sinh vật.

Sai số của phương pháp đếm trên đĩa thạch phải được tính đến. Hai lần đếm thường được coi là khác nhau khi sự khác biệt của chúng vượt quá 50 %.

LƯU Ý: Các điều kiện kiểm tra hiệu quả của chất trung hòa (chất trung hoà, thể tích,...) và đặc biệt là độ pha loãng của mẫu (1/10, 1/100 hoặc pha loãng khác) mà ở điều kiện đó hiệu quả trung hòa được chứng minh.

Nếu kết quả không thỏa mãn các yêu cầu, cần phải:

— Thay đổi chất trung hòa (xem Phụ lục C) hoặc pha loãng mẫu nhiều hơn;

...

...

...

Nếu kết quả vẫn không đáp ứng với yêu cầu, thì có khả năng mẫu thử không bị nhiễm những chủng đã thử nghiệm. Trong trường hợp này, cần phải có báo cáo thử nghiệm (5.7 và 5.8 f).

5.6  Xác định hiệu quả bảo quản của công thức

5.6.1  Tiến hành

Tiến hành thử nghiệm riêng cho từng chủng

5.6.1.1  Mở bao bì và ước lượng mẫu thử

Đối với mỗi chủng, cân / hút 20 g hoặc 20 ml chế phẩm thử vào một bình chứa vô khuẩn (5.2.2.3).

5.6.1.2  Nuôi cấy vi sinh thử nghiệm

Thêm vào mỗi bình chứa 0,2 ml chủng chuẩn (5.4.2 và 5.4.3) để có được nồng độ chủng cuối cùng trong bình mẫu thử là từ 1 x 10⁵ CFU/ml đến 1 x 10⁶ CFU/ml hoặc g cho vi khuẩn và từ 1 x 10⁴ CFU/ml đến 1x10⁵ CFU/ml hoặc g đối với C. albicans và A. brasiliensis. Trộn đều để đảm bảo sự phân bố đồng đều của chủng.

Nồng độ chủng ban đầu được cấy vào ống mẫu thử có chứa mẫu được cấy, N_o, được tính bằng cách sử dụng các kết quả đếm của dung dịch chủng chuẩn, N (5.6.3.2.b).

...

...

...

Bảo quản các bình chứa chứa mẫu đã thêm chủng ở nhiệt độ 22,5 °C ± 2,5 °C.

5.6.1.4  Lấy mẫu và đếm mẫu

a) Tại mỗi thời điểm lấy mẫu quy định, 7 ngày (T7), 14 ngày (T14) và 28 ngày (T28), theo chủng thử nghiệm (xem Phụ lục B), lấy 1 g mẫu đã được cấy chủng và pha loãng đến nồng độ mà hiệu quả chất trung hoà đã được chứng minh (5.5). Đảm bảo hệ số pha loãng chính xác khi sử dụng để tính giá trị N_x (5.6.3.3).

Để tiếp xúc trong 30 min ±15 min ở nhiệt độ phòng.

b) Bắt đầu từ độ pha loãng mà ở đó hiệu quả chất trung hòa được chứng minh, pha loãng gấp 10 lần trong dung dịch pha loãng (5.2.3).

c) Quá trình đếm vi sinh vật sẽ được tiến hành lặp lại 2 lần ở môi trường thích hợp (TSA cho vi khuẩn, SDA cho C. albicans và PDA cho A. brasiliensis) cho tất cả độ pha loãng vào thời điểm T7. Vào thời điểm T14 và T28, số lần pha loãng có thể được điều chỉnh dựa theo kết quả thu được tại thời điểm T7.

d) Cho mỗi 1 ml dung dịch mẫu pha loãng vào đĩa pertri có đường kính 85 mm ÷ 100 mm, thêm 15 ml đến 25 ml môi trường thạch được làm nóng chảy (5.4.2) và giữ trong bể ổn nhiệt không quá 48 °C. Nếu sử dụng đĩa petri lớn hơn thì sử dụng lượng thạch tăng thêm sao cho phù hợp. Trộn cẩn thận dung dịch với môi trường bằng cách xoay và nghiêng đĩa petri đủ để phân tán đều hỗn dịch chủng. Để đĩa pertri trên bề mặt phẳng ở nhiệt độ phòng đến khi hỗn hợp đông lại thành thể rắn. Các phương pháp đếm khác có thể được sử dụng (phương pháp trải và màng lọc) tuân theo các thông số đã đưa ra ở trên.

Nên sử dụng 1 ml dung dịch để đếm nhằm tăng cường độ chính xác của phép đếm.

e) Đối với vi khuẩn và C. albicans ủ ở 32,5 °C ± 2,5 °C trong 48 h đến 72 h và đối với A. brasiliensis ủ ở 22,5 °C ± 2,5 °C từ 3 ngày đến 5 ngày.

...

...

...

Sau khi ủ, tiến hành đếm các khuẩn lạc trên các đĩa petri. Đối với tất cả các phép đếm (5.4.2.5, 5.4.3.5, 5.6.1.4 c) số lượng các khuẩn lạc trong các đĩa phải từ 30 ÷ 300 khuẩn lạc cho vi khuẩn hiếu khí và từ 15 ÷ 150 khuẩn lạc đối với A. brasiliensis.

Khi số lượng vi sinh vật sống lại trong mục 5.6.1.4 c) nhiều hơn 300 (150 đối với A.brasiliensis), lưu ý kết quả là > 300 (> 150 đối với A. brasiliensis).

Khi xuất hiện kết quả nhỏ hơn 30 khuẩn lạc đối với vi khuẩn và C. albicans, hoặc nhỏ hơn 15 khuẩn lạc đối với A. brasiliensis ở độ pha loãng mà sự trung hoà đã được xác nhận thì ghi lại số lượng khuẩn lạc trên đĩa petri và biểu thị kết quả bằng việc nhân với hệ số pha loãng.

Nếu không phát hiện khuẩn lạc nào ở độ pha loãng đã xác định hiệu quả chất trung hoà thì kết quả ghi là < 1 và nhân với hệ số pha loãng.

Xác định số lượng vi sinh vật có trong mẫu ở thời điểm t₀ (N₀ = N/100) theo như trong mục 5.6.3.2 và số vi khuẩn sống lại ở mỗi thời điểm lấy mẫu Nx theo mục 5.6.3.3.

5.6.3  Tính toán

5.6.3.1  Quy định chung

Cần kiểm tra rằng hiệu quả ức chế vi sinh vật của chất bảo quản đã được xác nhận (5.5.4) và các số liệu thực nghiệm tuân theo nguyên tắc được nêu trong mục 5.6.2.

5.6.3.2  Xác định số lượng chủng vi sinh ban đầu N và N₀

...

...

...

(1)

Trong đó:

là số khuẩn lạc trung bình tính trên 2 đĩa (5.6.2)

V

là thể tích chủng thêm vào mỗi đĩa petri (1 ml theo 5.4.2 và 5.4.3)

...

...

...

d

là hệ số pha loãng của dung dịch được đếm

N

phải từ 1 x 10⁷ CFU/ml đến 1 x 10⁸ CFU/ml cho vi khuẩn và từ 1 x 10⁶ CFU/ml đến 1 x 10⁷ CFU/ml đối với C. albicans và A. brasiliensis

b) Xác định N₀ là số lượng vi sinh vật được thêm vào tại thời gian t₀ sử dụng công thức (2):

N₀ = N/100

(2)

N₀ sẽ từ 1 x 10⁵ CFU/ml đến 1 x 10⁶ CFU/ml hoặc g cho vi khuẩn và từ 1 x 10⁴ CFU/ml đến 1 x 10⁵ CFU/ml hoặc g cho C. albicans và A. brasiliensis.

...

...

...

Tính N_x là số lượng vi sinh sống lại được trong mẫu đã được tạp nhiễm các chủng thử nghiệm theo đơn vị khuẩn lạc trên mỗi ml hoặc gam tại mỗi điểm thời gian (T7, T14 hay T28) sử dụng công thức (3):

N_x = C / (V x d)

(3)

Trong đó:

C

là số khuẩn lạc trung bình tính trên 2 đĩa (5.6.2)

V

...

...

...

d

là hệ số pha loãng của dung dịch được đếm (5.6.1.4.c)

5.6.3.4  Sự giảm trong phép đếm vi sinh

Tính giá trị giảm R_x, được biểu thị qua đơn vị log, thu được tại mỗi thời điểm của mẫu sử dụng công thức (4):

R_x = lgN₀ - lgN_x

(4)

Trong đó:

...

...

...

số lượng vi sinh tại thời điểm t₀ (5.6.3.2 b)

N_x

số lượng vi sinh tại thời điểm t_x (5.6.3.3)

Có thể có trường hợp không có sự giảm số lượng vi sinh, thậm chí có trường hợp tăng số lượng vi sinh.

5.7  Giải thích kết quả và kết luận

5.7.1  Tiêu chí chấp nhận

Giá trị giảm log R_x (5.6.3.4) được so sánh với giá trị nhỏ nhất được yêu cầu cho tiêu chuẩn đánh giá A hay B được nêu trong mục Phụ lục B.

Tiêu chuẩn chấp nhận diễn tả hiệu quả kháng vi sinh vật của công thức mỹ phẩm như sau:

...

...

...

— Tiêu chuẩn B: theo đó mức độ kháng vi sinh vật có thể chấp nhận được nếu phân tích rủi ro chứng minh sự tồn tại của các yếu tố kiểm soát không liên quan đến công thức cho thấy rủi ro vi sinh có thể chấp nhận đối với sản phẩm mỹ phẩm.(6.2 b).

Tiêu chuẩn chấp nhận được diễn tả bằng giá trị giảm log nhỏ nhất hay bằng “NI" khi sự yêu cầu là không có sự gia tăng về số lượng vi sinh vật.

Sai số của phương pháp vi sinh được sử dụng để xác định các giá trị R_x là giá trị sẽ được xem xét khi so sánh các giá trị R_x đã thu được và các tiêu chí A hoặc B. Trong tiêu chuẩn này, độ lệch khoảng 0,5 log so với các giá trị tiêu chuẩn được coi là chấp nhận được.

5.7.2  Trường hợp tổng quát (hiệu quả của chất trung hòa được chứng minh với tất cả các chủng vi sinh)

Đối với mỗi chủng vi sinh so sánh giá trị R_x với các giá trị tiêu chuẩn A hay B (Phụ lục B và 5.7).

a) Nếu tất cả các giá trị giảm phù hợp với tiêu chí A, công thức đáp ứng những yêu cầu A của phép thử hiệu quả chất bảo quản và phù hợp (6.2 a) đáp ứng những yêu cầu của tiêu chuẩn này.

b) Nếu tất cả các giá trị giảm chỉ phù hợp với tiêu chí B thì công thức đáp ứng yêu cầu B của kiểm tra hiệu quả chất bảo quản, cần phải bổ sung thêm bằng chứng để chỉ ra rằng sản phẩm đáp ứng các yêu cầu của tiêu chuẩn này (6.2 b).

c) Nếu một hoặc nhiều giá trị giảm không phù hợp với tiêu chí A hoặc B, thì công thức không đáp ứng các yêu cầu của kiểm tra hiệu quả chất bảo quản. Tình trạng của sản phẩm chỉ được đánh giá theo đánh giá rủi ro vi sinh học (6.2 c).

5.7.3  Trường hợp đối với công thức mà hiệu quả của chất trung hòa không chứng minh được cho một số chủng

...

...

...

Giải thích các kết quả cho các chủng mà hiệu quả của chất trung hòa được chứng minh và so sánh các giá trị của R_x với giá trị tiêu chuẩn A hoặc B đã được thiết lập (Phụ lục B và 5.7).

Nếu tất cả các giá trị giảm phù hợp với tiêu chí A (hoặc B), công thức thỏa mãn bởi phép ngoại suy các yêu cầu A (hoặc B) của việc kiểm tra hiệu quả chất bảo quản.

Nếu một hoặc nhiều giá trị giảm không tuân theo tiêu chí A (hoặc B), công thức không đáp ứng các yêu cầu của kiểm tra hiệu quả chất bảo quản.

5.8  Báo cáo thử nghiệm

Báo cáo thử nghiệm bao gồm các thông tin sau:

a) Viện dẫn tiêu chuẩn này, nghĩa là TCVN 13632 (ISO 11930:2019, Amendment 1-08/2022);

b) Tên của phòng thí nghiệm tiến hành phép thử;

c) Nhận diện sản phẩm mỹ phẩm (hoặc công thức):

1) Tên của sản phẩm;

...

...

...

3) Tên của các tổ chức chịu trách nhiệm về tiếp thị sản phẩm và tên của các nhà sản xuất, nếu biết;

4) Ngày nhận ở phòng thí nghiệm;

5) Điều kiện lưu trữ tại phòng thí nghiệm.

d) Phương pháp đếm được sử dụng;

e) Các điều kiện thử nghiệm;

1) Thời gian phân tích;

2) Điều kiện ủ của mẫu đã thêm chủng;

3) Thành phần của chất trung hòa;

4) Nhiệt độ ủ của đĩa Petri;

...

...

...

6) Chủng kiểm tra (chủng gốc và những điều kiện lưu trữ);

7) Các cách thức gây nhiễm của mẫu với các vi sinh thử nghiệm (khối lượng / thể tích của sản phẩm, thể tích của hỗn dịch chuẩn).

f) Kết quả phép thử:

1) Số lượng ban đầu của các vi sinh vật, N và N₀ (5.6.3.2 a và 5.6.3.2 b);

2) Các kết quả chứng minh hiệu quả chất trung hòa đối với mỗi chủng thử và nồng độ của mẫu mà hiệu quả trung hòa được chứng minh (trong trường hợp không thể hiện được đối với một số chủng, cho biết các kết quả thử nghiệm thu được và các thử nghiệm thực hiện để đạt được sự trung hòa);

3) Những kết quả thử nghiệm (kết quả đếm, kết quả tính giá trị giảm log cho mỗi chủng thừ và tại mỗi thời điểm lấy mẫu;

g) Kết luận.

6  Đánh giá tổng thể cho hiệu quả kháng vi sinh vật của các sản phẩm mỹ phẩm

6.1  Nguyên tắc

...

...

...

6.2  Trường hợp 1 - Phép thử hiệu quả bảo quản được thực hiện trên công thức

a) Nếu công thức đáp ứng tiêu chí A, rủi ro về vi sinh được coi là có thể chấp nhận được (sản phẩm mỹ phẩm được bảo vệ kháng lại sự tăng sinh vi sinh vật có thể gây nguy hiểm cho người sử dụng) và sản phẩm mỹ phẩm được coi là đáp ứng yêu cầu của tiêu chuẩn này mà không cần có lý do bổ sung.

b) Nếu công thức này đáp ứng tiêu chí B, phân tích rủi ro vi sinh phải chứng minh có các yếu tố kiểm soát không liên quan đến công thức; ví dụ, bao bì đóng gói là dạng bơm sẽ có mức độ bảo vệ cao hơn so với bình (xem Phụ lục D). Đây sẽ là dạng đóng gói bảo vệ để giảm nguy cơ. Do đó, nếu phân tích rủi ro chứng minh là có các yếu tố kiểm soát, sản phẩm mỹ phẩm được coi là đáp ứng các yêu cầu của tiêu chuẩn này trên cơ sở tiêu chí B với các đặc điểm bổ sung cho thấy rủi ro vi sinh có thể chấp nhận được.

c) Nếu công thức không đáp ứng tiêu chí A hoặc B, thì tình trạng của sản phẩm sẽ được đánh giá theo đánh giá rủi ro vi sinh. Ví dụ, một sản phẩm đơn liều sẽ được coi là có nguy cơ vi sinh có thể chấp nhận được, ngay cả khi công thức không đáp ứng yêu cầu của tiêu chí A hoặc B, với điều kiện chất lượng vi sinh của sản phẩm hoàn thiện được đảm bảo tại thời điểm xuất xưởng.

CHÚ THÍCH: Các dữ liệu khác như dữ liệu khách hàng đang sử dụng sản phẩm có thể được sử dụng để chứng minh rủi ro vi sinh của một sản phẩm.

Do đó, nếu phân tích rủi ro cho thấy sự tồn tại của các yếu tố kiểm soát được tăng cường (giảm rủi ro) thì sản phẩm mỹ phẩm được coi là đáp ứng các yêu cầu của tiêu chuẩn này.

d) Nếu sản phẩm mỹ phẩm không đáp ứng với bất kỳ với tình huống nào trong 3 trường hợp vừa nêu thì nó không thỏa mãn với những yêu cầu của tiêu chuẩn này.

6.3  Trường hợp 2 - Phép thử hiệu quả bảo quản không được thực hiện trên công thức

Theo tiêu chuẩn TCVN 13641 (ISO 29621), các tổ chức chịu trách nhiệm về sản xuất và / hoặc tiếp thị của sản phẩm mỹ phẩm phải xác định những đặc điểm của công thức hoặc các thành phẩm mỹ phẩm các yếu tố kiểm soát nhằm đảm bảo rằng nguy cơ vi sinh là thấp.

...

...

...

Do đó nếu những kết quả phân tích rủi ro vi sinh chỉ ra rằng công thức hay thành phẩm được xem là có nguy cơ thấp thì sản phẩm mỹ phẩm được coi là đáp ứng các yêu cầu của các yêu cầu của tiêu chuẩn này trên cơ sở đánh giá rủi ro vi sinh vật, với điều kiện là quy trình sản xuất sản phẩm tuân thủ thực hành sản xuất tốt.

Nếu kết quả đánh giá rủi ro vi sinh cho thấy một công thức hoặc thành phẩm có mức độ rủi ro không chấp chận được thì sản phẩm đó không đáp ứng được với các yêu cầu của tiêu chuẩn này. Việc giảm rủi ro sẽ phải được thực hiện, nhằm đảm bảo sản phẩm này tuân thủ theo yêu cầu.

PHỤ LỤC A

(Quy định)

Hình A.1: Sơ đồ quyết định

PHỤ LỤC B

...

...

...

Tiêu chí đánh giá cho thử nghiệm kiểm tra hiệu quả bảo quản

Bảng B.1 - Đánh giá hiệu quả kháng vi sinh vật

Yêu cầu về giá trị giảm log (Rx = logN₀ - logN_x) yêu cầu^a

Vi sinh vật

Vi khuẩn

C.albicans

A. brasiliensis

Thời điểm về lấy mẫu thử nghiệm

T7

...

...

...

T28

T7

T14

T28

T14

T28

Tiêu chuẩn A

≥ 3

≥ 3 và Nl^b

...

...

...

≥ 1

≥ 1 và NI

≥ 1 và NI

≥ 0^c

≥ 1

Tiêu chuẩn B

Không thực hiện

≥ 3

≥ 3 và NI

...

...

...

≥ 1

≥ 1 và NI

≥ 0

≥ 0 và NI

^a Trong thử nghiệm này, một dãy giá trị chênh lệch của 0,5 log được chấp nhận (5.7)

^b NI: không tăng số lượng từ thời điểm tiếp xúc mẫu

^c R_x= 0 khi Ig N₀ = Ig N_x (không tăng từ khi đếm ban đầu)

PHỤ LỤC C

...

...

...

Ví dụ về chất trung hòa chất kháng vi sinh vật và dung dịch rửa

Bảng C.1 - Các chất trung hòa tương ứng với hoạt tính kháng vi sinh vật của chất bảo quản và các dung dịch rửa / lọc

Chất bảo quản

Hợp chất hóa học có thể trung hòa hoạt tính kháng khuẩn của chất bảo quản

Ví dụ về thành phần chất trung hòa thích hợp và các dung dịch rửa

(dùng cho phương pháp màng lọc)

Các hợp chất phenol:

Các paraben, phenoxyethanol,

Phenylethanol, v.v...

...

...

...

Lecithin,

Polysorbat 80,

Ethylen oxid ngưng tụ của cồn béo (fatty alcohol)

Chất hoạt động bề mặt không ion

30 g/l Polysorbat 80 + 3 g/l lecithin

7 g/l Ethylen oxid ngưng tụ của cồn béo + 20 g/l lecithin + 4 g/l polysorbate 80

Môi trường lỏng trung hòa D/Ea, môi trường lỏng SDCLPb

Dung dịch rửa: nước cất vô khuẩn; 1 g/l trypton, + 9 g/l NaCI; 5 g/l polysorbat 80

Các hợp chất amoni bậc bốn

...

...

...

Lecithin, saponin, polysorbat 80, natri dodecyl sulphat

Ethylen oxid ngưng tụ của cồn béo (fatty alcohol)

30 g/l Polysorbat 80 + 4 g/l natri dodecyl sulphat + 3 g/l lecithin

30 g/l Polysorbat 80 + 30 g/l saponin + 3 g/l lecithin

Môi trường lỏng trung hòa D/E^a, môi trường lỏng SDCLP^b

Dung dịch rửa: nước cất vô khuẩn; 1 g/l trypton, + 9 g/l NaCI; 5 g/l polysorbat 80

Các andehit

Các chất giải phóng formaldehyd

Glycin, histidin

...

...

...

30 g/l Polysorbat 80 + 30 g/l saponin + 1 g/l L- histidin + 1 g/l L-cystein

Môi trường lỏng trung hòa D/E^a, môi trường lỏng SDCLP^b

Dung dịch rửa: nước cất vô khuẩn; 3 g/l polysorbat 80 + 0,5 g/l L-histidin

Các hợp chất oxy hóa

Natri thiosulfat

5 g/l Natri thiosulfat

Dung dịch rửa: 3 g/l Natri thlosulfat

Các isothiazolinon, imidazol

Lecithin, saponin

...

...

...

30 g/l Polysorbat 80 + 30 g/l saponin + 3 g/l lecithin

Dung dịch rửa; 1 g/l trypton + 9 g/l NaCI; 5 g/l polysorbat 80

Các biguanide

Lecithin, saponin, polysorbat 80

30 g/l Polysorbat 80 + 30 g/l saponin + 3 g/l lecithin

Dung dịch rửa: 1 g/l trypton + 9 g/l NaCI; 5 g/l polysorbat 80

Các muối kim loại (Cu, Zn, Hg)

Các muối thủy ngân hữu cơ

Natri bisulfat, L-cystein

...

...

...

0,5 g/l hay 5 g/l Natri thioglycolat

0,8 g/l hay 1,5 g/l L-cystein

Môi trường lỏng trung hòa D/Ea, môi trường lỏng SDCLPb

Dung dịch rửa: 0,5 g/l Natri thloglycolat

^a Môi trường lỏng trung hòa D/E (Môi trường lỏng trung hòa Dey/Engley) - xem Phụ lục B

^b Môi trường lỏng casein thủy phân từ đậu tương bổ sung lecithin và polysorbat

PHỤ LỤC D

(Tham khảo)

...

...

...

Cần cân nhắc đến đặc tính của bao bì. Thiết kế bao bì đóng một vai trò quan trọng trong kế hoạch đánh giá rủi ro và trong việc xác định khả năng kháng lại vi sinh vật của một sản phẩm mỹ phẩm.

Đặc tính của bao bì, hoặc việc sử dụng một loại bao bì có thể dùng lại, có thể ảnh hưởng đến việc lựa chọn hệ thống bảo quản. Khả năng nhiễm vi sinh vật do người dùng sẽ tăng lên khi bao bì cỏ miệng rộng và phải chịu sự tiếp xúc trực tiếp của người dùng. Tương tự như vậy, nguy cơ nhiễm vi sinh bởi người dùng sẽ giảm khi bao bì là dạng đơn liều, ống nhỏ mắt một chiều hoặc khi ngăn ngừa việc tiếp xúc trực tiếp giữa sản phẩm với người dùng. Kích thước bao bì so với số lượng được sử dụng cho mỗi lần dùng nên được xem xét vì việc sử dụng một bao bì lớn có chứa nhiều sản phẩm hơn và kéo dài thời gian sử dụng trong một khoảng thời gian dài làm tăng khả năng lây nhiễm. Sự có mặt của các vật dụng bổ sung như bàn chải, miếng đệm hoặc miếng bông phấn cũng sẽ ảnh hưởng đến nhu cầu bảo vệ kháng vi sinh.

Các yếu tố sau đây nằm trong số những yếu tố được xem xét khi đánh giá rủi ro sản phẩm liên quan đến bao bì:

— Dạng đóng gói đơn liều hay đa liều;

— Kích cỡ đóng gói;

— Cách thức bào chế sản phẩm;

— Thời gian sử dụng ước đoán;

— Khả năng bao bì cho phép tiếp xúc trực tiếp với người sử dụng hay không;

— Khả năng bao bì có bị áp lực hay không.

...

...

...

Thư mục tài liệu tham khảo

[1] TCVN 12976 (ISO 22716), Mỹ phẩm - Thực hành sản xuất tốt (GMP) - Hướng dẫn thực hành sản xuất tốt

[2] TCVN 6844 (ISO/IEC Guide 51), Hướng dẫn việc đề cập khía cạnh an toàn trong tiêu chuẩn

[3] EN 12353, Chemical disinfectants and antiseptics — Preservation of test organisms used for the determination of bactericidal, mycobactericidal, sporicidal and fungicidal activity (Hóa chất khử khuẩn và chất khử khuẩn — Bảo quản các sinh vật thử nghiệm được sử dụng để xác định hoạt tính diệt khuẩn, diệt khuẩn, diệt khuẩn và diệt nấm)

[4] IBRAHIM Y.K.E., GEISS H.K., SONNAG H.-G, Alternatives to the traditional preservatives, SoFW, 118, June 1192

[5] LUCK E., JAGER M., Antimicrobial food additives; characteristics, uses, effects, Springer (ed), 1995, pp. 122-124

[6] Application of Water Activity Determination to Nonsterile Pharmaceuticals Products. USPC, Inc., 30(5), 2006, in-process revision: <1112>

[7] CTFA Microbiology guidelines 2007

[8] RUSSELL N.J., GOULD G.W., Food preservatives, Blackie and Son Ltd., 1991, pp. 16-17

...

...

...

[10] RAHMAN M.S., Handbook of food preservation, Marcel Dekker, Inc., 1999, pp. 95-172 and p.386

[11] MEIER M., FISHER F.X., KELLER M., HALFMANN H.J., Influence of alternative propellants on microbial viability in comparison to chlorofluorocarbons, Pharm. Ind., 58, pp.78-82, 1996

[12] DECLERCK J., CAIRE-MAURISIER F, GENOT P., LEVACHER E., MICHAUT A., SCHEIBER G., TARDIVET S., Les gaz propulseurs: les HFC (hydrofluorocarbones) alternatives aux CFC (chlorofluorocarbones) pour les preparations pharmaceutiques pressurisees, SFSTP Pharmapratiques, 16(1), January/February 2006, pp.61-72

[13] BLOOMFIELD S.F., BAIRD R., LEAK R.E., LEECH R., Microbial Quality Assurance in Pharmaceuticals, Cosmetics and Toiletries, Ellis Horwood Series in Pharmaceutical Technology, 1988, p.78

[14] SAWYER E., GREEN B., COLTON H., Microorganisms survival in non-CFC propellant P134a and a combination of CFC propellants P11 and P12, Pharmaceutical Technology, March 2001, pp.90-96

[15] BRANNAN D.K., Packaging’s role in preservation, Cosmetics and Toiletries, 113, Abilene Christian University, Abilene, TX, April 1998

[16] SHARPELL F., & MANOWITZ M., Preservation of cosmetics, Disinfection, sterilization and preservation, fourth edition, Seymour S. Block — Lea & Febiger, 1991

[17] IBRAHIM Y.K.E., & SONNAG H.-G., Preservative potentials of some aerosol propellants, Effectiveness in some pharmaceutical oils, Drugs made in Germany, 2, 1995

[18] KABARA J.J., & ORTH D.S., Principles for product preservation, Preservative-free and self- preserving cosmetics and drugs, principles and practice, Marcel Dekker, Inc. (ed.), New York, 1997, pp.1-14

...

...

...

[20] BRANNAN D.K., & DILLE J.C., Type of closure prevents microbial contamination of cosmetics during consumer use, Appl. Environ. Microbiol., 56, 1990, pp. 1476-1479

[21] ENIGLD C., & SORRELS K.M., Water activity and self-preserving formulas, Preservative- free and self-preserving cosmetics and drugs, principles and practice, Marcel Dekker, lnc.(ed.), New York, 1997, pp.45-71

[22] MISOCK J. "Report For International Cooperation On Cosmetics Regulation Regulators & Industry Joint Working Group (JWG): Review of ISO Microbiological Standards: Guidelines for Cosmetic Preservation and Product Protection", June 6, 2017

Mục lục

Lời nói đầu

Lời giới thiệu

1  Phạm vi áp dụng

2  Tài liệu viện dẫn

...

...

...

3.1  Công thức mỹ phẩm (cosmetic formulation)

3.2  Sản phẩm mỹ phẩm (cosmetic product)

3.3  Tính kháng vi sinh vật của sản phẩm mỹ phẩm (antimicrobial protection of a cosmetic product)

3.4  Sự bảo quản của một công thức mỹ phẩm (preservation of a cosmetic formulation)

3.5  Phương pháp đối chứng (reference method)

3.6  Phương pháp phát triển (development method)

3.7  Người dùng (consumer)

4  Nguyên tắc

5  Thử nghiệm hiệu quả bảo quản

...

...

...

5.2  Vật liệu, thiết bị, thuốc thử và môi trường nuôi cấy

5.3  Chủng vi sinh vật

5.4  Chuẩn bị và đếm chủng vi sinh vật

5.5  Chứng minh hiệu quả của chất trung hòa

5.6  Xác định hiệu quả bảo quản của công thức

5.7  Giải thích kết quả và kết luận

5.8  Báo cáo thử nghiệm

6  Đánh giá tổng thể cho hiệu quả kháng vi sinh vật của các sản phẩm mỹ phẩm

6.1  Nguyên tắc

...

...

...

6.3  Trường hợp 2 - Phép thử hiệu quả bảo quản không được thực hiện trên công thức

PHỤ LỤC A (Quy định) Hình A.1: Sơ đồ quyết định

PHỤ LỤC B (Quy định) Tiêu chí đánh giá cho thử nghiệm kiểm tra hiệu quả bảo quản

PHỤ LỤC C (Tham khảo) Ví dụ về chất trung hòa chất kháng vi sinh vật và dung dịch rửa

PHỤ LỤC D (Tham khảo) Đặc tính đóng gói

Thư mục tài liệu tham khảo

[1]⁾ Triton X100^® là một ví dụ về một sản phẩm phù hợp có sẵn trên thị trường. Thông tin này được cung cấp để tạo sự thuận tiện cho người sử dụng tài liệu này và xác lập sự chứng thực của ISO đối với sản phẩm nay.

[2]⁾ ATCC^®: American Type Culture Collection

[3]⁾ CIP^®: Collection de I’Instiut Pasteur

...

...

...

[5]⁾ NBRC^®: NITE Biological Resource Center, JP

[6]⁾ KCTC^®: Korean Collection for Type Cultures

[7]⁾ NCTC^®: National Collection of Type Cultures

[8]⁾ IP^®: Institut Pasteur

[9]⁾ NCPF^®: National Collection of Pathogenic Fungi

[10]⁾ IMI^®: International Mycological institute, UK

Tiêu chuẩn quốc gia TCVN 13632:2023 (ISO 11930:2019 with Amendment 1:2022) về Mỹ phẩm - Vi sinh vật - Đánh giá tính kháng vi sinh vật của sản phẩm mỹ phẩm