4.14. Dung dịch gốc của hỗn hợp aflatoxin

Chuẩn bị dung dịch gốc có chứa 500 ng/ml aflatoxin B₁, 125 ng/ml aflatoxin B₂, 250 ng/ml aflatoxin G₁ và 125 ng/ml aflatoxin G₂ trong toluen/axetonitril (4.9). Nếu cần bảo quản dung dịch, thì cân bình trước khi bảo quản. Gón kín bình bằng lá nhôm và bảo quản ở nhiệt độ khoảng 4 ^oC. Ngay trước khi sử dụng, cân lại bình và ghi lại bất kỳ sự thay đổi nào về khối lượng sau khi bảo quản.

CHÚ THÍCH: Thông thường việc phơi nhiễm dưới ánh sáng UV trong suốt quá trình đo độ hấp thụ dẫn đến không quan sát được sự thay đổi phản ứng quang hóa.

4.15. Dung dịch chuẩn của hỗn hợp aflatoxin

Chuyển từng lượng dung dịch gốc aflatoxin đã trộn (4.14) theo qui định trong bảng 2 vào dãy bốn bình định mức 2 ml (5.5). Làm bay hơi dung dịch cho đến khô dưới dòng khí nitơ ở nhiệt độ phòng. Thêm 1 ml metanol (4.6) vào mỗi bình. Hòa tan cặn khô vào đó, pha loãng dung dịch đến vạch bằng nước (4.1) và trộn đều. Chuẩn bị dung dịch mới trong ngày để sử dụng.

Bảng 2 – Chuẩn bị dung dịch chuẩn

Dung dịch chuẩn

Thể tích được lấy từ dung dịch gốc

Nồng độ của aflatoxin
ng/ml

...

...

...

B₂

G₁

G₂

1

60

15,0

3,75

7,50

3,75

...

...

...

40

10,0

2,50

5,00

2,50

3

20

5,00

1,25

...

...

...

1,25

4

10

2,50

0,625

1,25

0,625

CHÚ THÍCH: Các giá trị đã cho chỉ là hướng dẫn. Dãy chuẩn bao gồm các nồng độ của các mẫu.

4.16. Axit sulfuric, c(H₂SO₄) = 2 mol/l.

...

...

...

Ngâm dụng cụ thủy tinh phòng thử nghiệm đã tiếp xúc với dung dịch aflatoxin trong axit sulfuric (4.16) trong vài giờ, sau đó tráng kỹ (ví dụ ba lần) bằng nước để loại bỏ hết vết axit. Kiểm tra axit đã hết hay chưa hết bằng đo pH.

CHÚ THÍCH: Việc xử lý này là cần thiết vì nếu sử dụng dụng cụ thủy tinh không rửa bằng axit có thể làm thất thoát aflatoxin. Trong thực tế, việc xử lý này là cần thiết đối với các bình đáy tròn, bình định mức, ống đong, các lọ hoặc ống được dùng cho các dung dịch hiệu chuẩn và các dịch chiết cuối cùng (đặc biệt là các lọ mẫu tự động) và pipet Pasteur nếu chúng được dùng để chuyển dung dịch hiệu chuẩn hoặc dịch chiết.

Sử dụng các thiết bị thí nghiệm thông thường và cụ thể là:

5.1. Cột ái lực miễn nhiễm (IA)

Cột IA chứa các kháng thể hỗ trợ aflatoxin B₁, B₂, G₁ và G₂. Cột phải có khả năng liên kết tối thiểu không được nhỏ hơn 100 ng aflatoxin B₁. Cột phải có độ thu hồi không nhỏ hơn 80 % đối với aflatoxin B₁, B₂, G₁ và G₂ và không nhỏ hơn 60 % đối với aflatoxin G₁, khi một dung dịch chuẩn trong 15 ml hỗn hợp metanol/nước [1 phần metanol (4.6) và 3,4 phần nước (4.1) (theo thể tích)] có chứa 5 ng của mỗi aflatoxin được đưa lên cột [A, Cột IA phải được trang bị một nguồn chứa dung môi thích hợp (ví dụ, xy ranh có ống nối).

Nên tiến hành đo độ thu hồi đối với mỗi loại chất nền mà phương pháp này đã được sử dụng.

5.2. Máy trộn, có bình trộn 500 ml và nắp.

Nên sử dụng máy trộn tốc độ cao.

5.3. Giấy lọc gấp nếp, ví dụ đường kính 24 cm.

...

...

...

5.5. Bình định mức, loại A, dung tích 2 ml.

5.6. Máy đo quang phổ, có thể đo ở bước sóng trong khoảng từ 200 nm đến 400 nm.

5.7. Cuvét thạch anh, có chiều dài đường quang 1 cm và không hấp thụ đáng kể ở bước sóng từ 300 nm đến 370 nm.

5.8. Màng lọc đối với các dung dịch pha lỏng, bằng polytetrafluoroethylen (PTFE), có đường kính 4 mm và cỡ lỗ 0,45 .

5.9. Thiết bị HPLC, bao gồm:

5.9.1. Máy HPLC, có thể tạo ra tốc độ dòng 1 ml/phút.

5.9.2. Bộ bơm mẫu, có vòng bơm nạp 50 hoặc tương đương.

5.9.3. Cột tách phân tích pha đảo, ví dụ C18, có thể đảm bảo được đường nền cho các pic aflatoxin với aflatoxin B₁, B₂, G₁ và G₂ phân biệt được với các pic khác, có các đặc tính sau đây:

- chiều dài: 250 mm;

...

...

...

- cỡ hạt hình cầu; 5.

Có thể sử dụng các cột ngắn hơn.

5.9.4. Hệ thống dẫn xuất sau cột, gồm bơm không xung và chi tiết chữ T có thể tích chiết rất thấp, có ống nối bằng polytetrafluoroethylen (PTFE) hoặc thép không gỉ dài từ 3 000 mm đến 5000 mm và đường kính trong 0,5 mm và buồng cột hoặc bộ phản ứng sau cột đối với phản ứng iôt.

5.10. Detector huỳnh quang, có bước sóng kích thích 365 nm và bước sóng phát xạ 435 nm (đối với các thiết bị dùng kính lọc; bước sóng phát xạ > 400 nm), có khả năng phát hiện ít nhất 0,05 ng aflatoxin B₁ trên một thể tích bơm (trong trường hợp này là 50 ).

6. Cách tiến hành

6.1. Khái quát

Các dung dịch mẫu và dung dịch chuẩn dùng cho phép xác định HPLC phải chứa cùng một loại dung dịch hoặc hỗn hợp dung môi.

6.2. Chiết

Cân 25 g mẫu thử đã đồng hóa, chính xác đến 0,1 g, cho vào bình trộn (5.2). Thêm 5 g natri clorua (4.2) và 125 ml dung môi chiết (4.10) và đồng hóa bằng máy trộn trong 2 phút ở tốc độ cao. Kiểm tra để đảm bảo thời gian trộn và tốc độ trộn không được ảnh hưởng đến hiệu quả chiết. Lọc hỗn hợp qua giấy lọc gấp nếp (5.3) (V₁).

...

...

...

Để thu được dung dịch trong có thể cần phải ly tâm.

6.3. Làm sạch

Chuẩn bị cột IA (5.1) và tiến hành quy trình làm sạch theo các hướng dẫn của nhà sản xuất. Dùng pipet lấy 15 ml (V₄) của dịch lọc thứ hai (V₃) cho vào trong bình chứa dung môi của cột IA. Cho đi qua cột tách, sau đó rửa cột như mô tả trong hướng dẫn của nhà sản xuất và loại bỏ chất rửa giải. Bắt đầu rửa giải các aflatoxin. Thu lấy chất rửa giải metanol hoặc axetonitril (tùy thuộc vào sản phẩm hoặc các hướng dẫn của nhà sản xuất) cho vào bình định mức 2 ml (5.5) (hoặc thể tích khác theo qui định của nhà sản xuất). Pha loãng bằng nước đến vạch (V₅). Trộn và tiến hành theo 6.4.

Phương pháp để nạp lên cột IA, rửa và rửa giải hơi khác nhau giữa các hãng sản xuất cột và các hướng dẫn cụ thể đối với các loại cột cần phải tuân thủ một cách chính xác.

CHÚ THÍCH: Nhìn chung các qui trình bao gồm việc chiết mẫu bằng hỗn hợp metanol và nước, lọc hoặc ly tâm, pha loãng mẫu bằng dung dịch đệm phosphat (PBS) hoặc nước, nạp dưới áp suất lên cột đã được rửa trước, rửa cột bằng nước cất và rửa giải aflatoxin bằng metanol hoặc axetonitril (phụ thuộc vào sản phẩm và các hướng dẫn của nhà sản xuất)

Cột sillica gel hoặc cột chiết pha rắn (SPE) truyền thống có thể được sử dụng. Trong trường hợp này cần phải thực hiện chính xác các hướng dẫn của nhà sản xuất. Nếu dung môi được sử dụng để rửa giải aflatoxin không thích hợp với pha động, thì sau đó chất rửa giải phải được làm bay hơi đến khô bằng khí

V₆ là thể tích của dịch chiết mẫu (6.7) đã được làm sạch và bơm, tính bằng microlit (V₆ = 50 );

m_i là khối lượng của từng aflatoxin i có mặt trong thể tích bơm, tương ứng với diện tích pic đã đo hoặc chiều cao pic đọc được ở đường chuẩn, tính bằng nanogam;

m₁  là khối lượng của mẫu thử, tính bằng gam, có mặt trong phần dịch lọc thứ hai được lấy dùng cho cột IA (V₄) [theo công thức (2)].

...

...

...

8. Độ chụm

8.1. Thử liên phòng thử nghiệm

Các chi tiết của thử liên phòng thử nghiệm về độ chụm của phương pháp đưa ra trong phụ lục A các giá trị được lấy từ thử liên phòng thử nghiệm có thể không áp dụng cho dải nồng độ và các chất nền khác với giá trị đã nêu.

8.2. Độ lặp lại

Chênh lệch tuyệt đối giữa hai kết quả của hai phép thử độc lập đơn lẻ, thu được khi sử dụng cùng phương pháp trên vật liệu thử giống hệt nhau trong cùng một phòng thử nghiệm, do cùng một người thực hiện, sử dụng cùng thiết bị, thực hiện trong một khoảng thời gian ngắn, không quá 5 % các trường hợp vượt quá giới hạn lặp lại r dưới đây.

a) Các giá trị đối với ngô là:

- aflatoxin B₁:

= 14,9

r = 2,4

...

...

...

= 1,4

r = 1,0

- aflatoxin G₁:

= 7,2

r = 1,9

- aflatoxin G₂:

= 1,0

r = 0,6

- aflatoxin tổng số:

...

...

...

b) Các giá trị đối với bơ lạc là:

- aflatoxin B₁:

= 5,3

r = 2,2

- aflatoxin B₂:

= 0,6

r = 0,3

- aflatoxin G₁:

...

...

...

r = 1,5

- aflatoxin G₂:

= 0,2

r = 0,5

- aflatoxin tổng số:

= 8,4

c) Các giá trị đối với lạc là:

- aflatoxin B₁:

...

...

...

r = 1,5

- aflatoxin B₂:

= 1,1

r = 0,7

- aflatoxin G₁:

= 4,5

r = 0,8

- aflatoxin G₂:

= 0,6

...

...

...

- aflatoxin tổng số:

= 16

Dựa trên các kết quả thu được, thì chỉ có thể ước tính được hàm lượng aflatoxin của bơ lạc. Trong trường hợp ngô và lạc, thì có thể xác định được aflatoxin B₁ và G₁, còn B₂ và G₂ thì chỉ có thể ước tính hoặc phát hiện tương ứng.

8.3. Độ tái lập

Chênh lệch tuyệt đối giữa hai kết quả của hai phép thử độc lập đơn lẻ, thu được khi sử dụng cùng phương pháp trên vật liệu thử giống hệt nhau, trong các phòng thử nghiệm khác nhau, do những người khác nhau thực hiện, sử dụng các thiết bị khác nhau, không quá 5 % các trường hợp vượt quá giới hạn tái lập R đưa ra dưới đây.

a) Các giá trị đối với ngô là:

- aflatoxin B₁:

= 14,9

...

...

...

- aflatoxin B₂:

= 1,4

R = 1,2

- aflatoxin G₁:

= 7,2

R = 1,9

- aflatoxin G₂:

= 1,0

R = 1,5

...

...

...

= 24,5

b) Các giá trị đối với bơ lạc là:

- aflatoxin B₁:

= 5,3

R = 4,4

PHỤ LỤC A

(tham khảo)

...

...

...

Các dữ liệu sau đây thu được trong phép thử liên phòng thử nghiệm tiến hành năm 1999 và do AOAC và IUPAC tổ chức phù hợp với ISO 5725:1986. Các mẫu ngô, lạc và bơ lạc bị nhiễm bẩn tự nhiên và bị làm biến tính với 10 , 20  và 30  aflatoxin tổng số, theo tỷ lệ 7:1:3:1 của B₁, B₂, G₁ và G₂ tương ứng đã được điều tra đánh giá.

Mười phòng thử nghiệm tham gia nghiên cứu và số lượng của mỗi loại mẫu là một.

Trong suốt quá trình thử liên phòng thử nghiệm này, iôt được dùng làm thuốc thử dẫn xuất sau cột.

Bảng A.1 – Dữ liệu độ chụm và độ thu hồi đối với ngô

Thông số

Aflatoxin

B₁

B₂

G₁

...

...

...

Tổng số

Số lượng phòng thử nghiệm còn lại sau khi trừ ngoại lệ

9

9

9

10

9

Số lượng các kết quả được chấp nhận

18

...

...

...

18

20

18

Giá trị trung bình ,

14,88

1,38

7,18

1,05

24,49

...

...

...

0,68

0,35

0,68

0,20

1,79

Hệ số biến thiên lặp lại, %

5,8

25

9,5

...

...

...

7,3

Giới hạn lặp lại r (r = 2,8 s₁ ),

2,4

0,98

1,90

0,56

5,0

Độ lệch chuẩn tái lập s_R,

1,50

...

...

...

0,68

0,53

2,86

Hệ số biến thiên tái lập, %

10

30

9,5

51

11,7

...

...

...

4,20

1,15

1,90

1,48

8,01

Độ thu hồi, %

85

55

96

...

...

...

81

Bảng A.2 – Dữ liệu độ chụm và độ thu hồi đối với bơ lạc

Thông số

Aflatoxin

B₁

B₂

G₁

G₂

Tổng số

...

...

...

10

9

10

10

10

Số lượng các kết quả được chấp nhận

20

18

20

...

...

...

20

Giá trị trung bình ,

5,26

0,58

2,34

0,24

8,42

Độ lệch chuẩn lặp lại s₁,

0,78

...

...

...

0,55

0,19

1,45

Hệ số biến thiên lặp lại, %

14,9

21

24

79

17

...

...

...

2,2

0,34

1,54

0,53

4,06

Độ lệch chuẩn tái lập s_R,

1,56

0,22

0,71

...

...

...

2,54

Hệ số biến thiên tái lập, %

30

38

31

101

30

Giới hạn lặp lại R (R = 2,8 s_R ),

4,37

...

...

...

1,99

0,67

7,11

Độ thu hồi, %

90

70

93

29

84

...

...

...

Thông số

Aflatoxin

B₁

B₂

G₁

G₂

Tổng số

Số lượng phòng thử nghiệm còn lại sau khi trừ ngoại lệ

9

...

...

...

10

10

9

Số lượng các kết quả được chấp nhận

18

20

20

20

18

...

...

...

9,71

1,07

4,54

0,65

16

Độ lệch chuẩn lặp lại s₁,

0,53

0,25

0,28

...

...

...

0,83

Hệ số biến thiên lặp lại, %

5,5

23

6,2

42

5,2

Giới hạn lặp lại r (r = 2,8 s₁ ),

1,48

...

...

...

0,78

0,76

2,3

Độ lệch chuẩn tái lập s_R,

1,62

0,41

0,66

0,56

2,58

...

...

...

17

38

15

77

16

Giới hạn lặp lại R (R = 2,8 s_R ),

4,54

1,15

1,85

...

...

...

7,22

Độ thu hồi, %

83

64

91

39

80

Thư mục tài liệu tham khảo

...

...

...

[2] CASTEGNARO M., BAKER J., FREMY J.M., LAFONTAINE M., MIRAGLIA M., SANSONE E.B. and TELLING G.M. Laboratory decontamination and destrution of carcinogens in laboratory wastes: some mycotoxins, IARC Publication No. 113, international Agency of Research on Cancer (WHO), Lyon (France), 1991, p.63.

[3] Van TRIJP J.M.P and ROSS A.H. Model for caculation fo calibration curves, RIKILT Report 91.02, January 1991.

[4] TRUCKESS M.W. et al. Immunoaffinity of column chromatography coupled with solution fluorometry or liquid chromatography postcolumn derviatization for determination of aflatoxin in com, peanuts and peanut butter. Journal of the Association of Oddcial Analytical Chemists, 74 (1), 1991, pp. 81-88.

[5] ISO 31-0:1992, Quantities and unit – Part 0: General principles.

[6] ISO 5725:1986 Precision of test methods - Determination of repeatability and reproducibility for a standard test method by inter-laboratory test (đã hủy).

[7] TCVN 6910-1:2001 (ISO 5725-1:1994), Độ chính xác (độ đúng và độ chụm của phương pháp đo và kết quả đo. Phần 1 – Nguyên tắc và định nghĩa chung.

[8] TCVN 6910-2-:2001 (ISO 5725-2:1994), Độ chính xác (độ đúng và độ chụm của phương pháp đo và kết quả đo. Phần 2- Phương pháp cơ bản xác định độ lặp lại và độ tái lập của phương pháp đo tiêu chuẩn.

[9] EN 12955: 1999, Foodstuffs – Determination of aflatoxin B₁, and sum of aflatoxin B₁, B₂, G₁ and G₂ in cereals, shell-fruits and derived products – Hight performance liquid chromatographic method with postcolumn derivatization and immunoaffinity column clean-up.

[10] EN 12955:1999, Foodstuffs- Determination of aflatoxin B₁, and sum of aflatoxin B₁, B₂, G₁ and G₂ in peanuts, pistachios, figs, and paprika powder – Hight performance liquid chromatographic method with postcolumn derivatization and immunoaffinity column clean-up.

Tiêu chuẩn Việt Nam TCVN 7596:2007 (ISO 16050:2003) về thực phẩm - xác định Aflatoxin B1, và hàm lượng tổng số Aflatoxin B1, B2, G1 và G2 trong ngũ cốc, các loại hạt và các sản phẩm của chúng - phương pháp sắc ký lỏng hiệu năng cao